Медицинский справочник

Предстерилизационная очистка

10.09.2011 19:06

Санитария

Предстерилизационная очистка заключается в удалении белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных и дезинфицирующих средств с поверхностей медицинских инструментов.

По окончании проводят проверку на наличие белковых загрязнений и моющего средства.

Приготовьте:
- использованные инструменты в разобранном виде;
- емкость для моющего раствора;
- емкость для дистиллированной воды;
- моющие средства «Лотос», «Биолот»;
- пергидроль 27,5-ный;
- раствор натрия олеата;
- раствор фенолфталеина 1-ный;
- раствор азопирама;
- лотки;
- пипетки;
- мерные емкости;
- ватно-марлевые тампоны;
- марлевые салфетки;
- перчатки, фартук клеенчатый.

Технология
1. Наденьте фартук, перчатки.
2. Приготовьте моющий раствор:
- моющее средство «Лотос» — 5 г;
- пергидроль 27,5-ный — 17 мл;
- натрия олеат — 1,4 г;
- воду — до 1 л.
3. Подогрейте раствор до 50 °С.
4. Продезинфицированные и промытые проточной водой инструменты полностью погрузите в моющий раствор на 15 мин.
5. Вымойте каждое изделие в моющем растворе с помощью ватно-марлевых тампонов или ершиков.
6. Промойте все изделия проточной водой.
7. Промойте все изделия дистиллированной водой.
8. Определите качество предстерилизационной очистки. Для проверки используют 1 всех изделий, но не менее 3—5 штук.
9. Фенолфталеиновая проба на наличие остатков моющих средств. Пипеткой наносятся 1—2 капли на изделие. При наличии на инструменте моющего средства появляется розовое окрашивание в течение 30 с. В таком случае рекомендуется повторно промыть все изделия проточной и дистиллированной водой.
10. Азопирамовая проба на наличие белковых загрязнений. Пипеткой на инструменты наносится рабочий раствор азопирама — 3—4 капли, у полых инструментов (шприцы, иглы) проверяются внутренние поверхности (шприцом через иглы на салфетку выдавливается раствор). Если в течение 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее в сиреневый и бурый цвета, то проба считается положительной. Появление окрашивания позднее 1 мин не учитывается. При положительной пробе следует повторить весь этап предстерилизационной очистки.
11. После проведения проб необходимо промыть тестируемые инструменты повторно проточной и дистиллированной водой.
12. Просушите инструменты в сухожаровом шкафу при температуре 80—85 °С до полного исчезновения влаги.

Приготовление раствора азопирама

В сухой посуде смешайте порошки «А» и «СА» из упаковки, залейте спиртом 95° до 100 мл и перемешайте до полного растворения.

Полученный раствор следует хранить в герметичном флаконе в холодильнике при температуре +4 °С не более 2 месяцев, при комнатной температуре в темном флаконе — не более 1 месяца. Незначительное изменение цвета раствора допустимо.

Перед проведением пробы необходимо приготовить рабочий раствор. Для этого следует смешать равные количества спиртового раствора азопирама и 3-ого раствора перекиси водорода. Рабочий раствор можно использовать в течение 1—2 ч, тестируемые мединструменты должны быть температурой не более 25 °С.

С помощью азопирамовой пробы можно определить наличие гемоглобина, пероксидаз, окислителей (хлорсодержащих растворов), ржавчины (солей железа) и кислот. Буроватое окрашивание отмечается при наличии ржавчины и хлорсодержащих компонентов. Белковые загрязнения дают фиолетово-розовое окрашивание.